Fermenteur / bioréacteur

LAMBDA MINIFOR laboratory fermenter-bioreactor

Fermenteur / bioréacteur

Grâce à l’innovation un fermenteur de qualité est proposé à moitié prix. LAMBDA MINIFOR introduit de nouveaux concepts dans la fermentation et la culture de cellules à l’échelle de laboratoire.

LAMBDA MINIFOR - Fermenteur-bioréacteur de laboratoire de paillasse

La conception du mini fermenteur-bioréacteur LAMBDA MINIFOR est le résultat d’une longue expérience personnelle en fermentation. Notre but était de construire un fermenteur de laboratoire de faible volume de 0.035 a plus de 6 litres, très compact, facile à utiliser, permettant à la fois de mesurer et contrôler tous les paramètres importants d’une culture biologique. Un effort tout particulier a été fait de façon à obtenir un prix de revient très bas sans pour autant sacrifier la qualité.

Ceci n’aurait pas été possible sans faire appel à des idées nouvelles et innovations importantes:

Les cuves pourvues de couvercles en inox, chères et difficiles à travailler ont été remplacées par des récipients en verre avec cols latéraux filetés, stérilisable en autoclave, qui ont déjà fait leurs preuves et garantissent une excellente stérilité.
Les autres pièces habituellement en acier inoxydable ont été remplacées par des matières plastiques modernes qui remplissent les mêmes fonctions à un prix inférieur.
L’habituel agitateur à hélice et son couplage magnétique onéreux a été remplacé par un agitateur vibreur. Son mouvement de va et vient garantit une agitation douce et efficace pour les cellules tout en évitant la formation de vortex. Une simple membrane maintient la stérilité à long terme (concept “stérilité facile“).
Pour les cultures de cellules qui requièrent d’une agitation particulièrement douce, un nouvel agitateur “queue de poisson“ a été développé.
Le fermenteur-bioréacteur MINIFOR est extrêmement compact, maniable et facilement accessible de tous les côtés. L’installation et le démontage sont simples et peuvent être réalisé en un temps record.
Le contrôle de la température est réalisé par une source à infrarouge (IR) placée sous le fermenteur. Ce radiateur assure un chauffage doux, précis et économique. L’échauffement des parois du fermenteur est faible, ce qui évite de brûler la culture. Cela simplifie aussi la construction du fermenteur : pas de doubles parois, pas de tuyau d’arrivée d’eau, pas de bain thermostaté.
L’électronique de contrôle du fermenteur est très compacte grâce à l’utilisation de microprocesseurs. L’ensemble du fermenteur et son unité de contrôle tiennent sur un espace équivalent à celui d’une feuille de papier A4, ce qui fait du fermenteur-bioréacteur LAMBDA MINIFOR le système de fermentation le plus compact sur le marché.
Il est possible de mesurer et contrôler jusqu’à six paramètres (température, agitation, pH, oxygène dissout (DO), débit d’air et un paramètre à libre choix). Toutes les valeurs sont visibles en même temps sur le panneau d’affichage LCD rétro-illuminé.
Le contrôle du débit d’air est effectué par un débitmètre massique de gaz précis, présentant une chute de pression minimale, et une vanne à aiguille proportionnelle contrôlée par microprocesseur.
Plusieurs fermenteurs peuvent être placés côte à côte en occupant très peu de place. Ils peuvent être connectés à un PC. Deux logiciels (en option) FNet ou SIAM permettent de gérer les fermenteurs de façon centralisée et d’archiver les données pour optimiser les expériences.

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Prix: € 12.099

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Manuel d'utilisation

Alimentation électrique: Alimentation universelle pour tension d’entrée 100-245 V AC/50-60 Hz, 560 W, conforme CE
Dimensions: 22 x 40 x 38 cm (W x D x H)
Affichage: LCD 4 x 40 digits avec rétro-éclairage
Cuves de fermentation: Verre Pyrex borosilicaté avec 6 à 8 ouvertures filetées; cuves de 0.3L, 0.4L, 1L, 3L ou 7L
Régulation de température: Source infrarouge (IR) de 150 W à grande efficacité avec miroir parabolique doré
Régulation: A partir de 5 °C au dessus de la température ambiante à 70 °C
Résolution: De 0 à 99.9 °C par pas de 0.1 °C
Précision: +/- 0.2 °C (0 à 60 °C)
Sonde: Sonde Pt100 incorporée dans l’électrode de pH
Régulation du pH: Electrode de pH stérilisable avec compensation automatique de la température, gamme 0 - 14, calibration semi-automatique à deux points et connecteur Variopin
Résolution: 0.01 unité de pH
Précision: +/- 0.02 unité de pH
Régulation de l‘O2 dissout: Electrode à oxygène de type Clark à réponse rapide et stérilisable, compensation automatique de température, calibration semi-automatique à deux points, régulation de l’oxygène dissout (OD) par le débit d’air
Résolution: 0 à 25 mg d’oxygène/L, par pas de 0.1 mg/L
Débit d’air: 0 à 5 L/min par pas de 0.01 L/min, mesuré par débitmètre précis, linéarité +/-3%, reproductibilité +/-0.5%
Reproductibilité: Vanne proportionnel contrôlée par microprocesseur
Aération: 0.05 – 0.2 MPa (0.5 - 2 atm)
Agitation: Vibromixeur 50 W, 0 à 20 Hz (0 à 1200 rpm) par pas de 0.1 Hz (6 rpm) avec un ou plusieurs disques d’agitation; stérilité équivalente à un couplage magnétique
Paramètre additionnel: Un paramètre supplémentaire peut être contrôlé par l’appareil (contrôle de la mousse, poids pour les cultures continues, pCO2, potentiel redox, conductivité, densité optique, etc.); avec entrée / sortie standard 0 - 10V ou 0 - 20mA
Prélèvements: Un large port quadruple pour prises d’échantillons ou additions avec 4 canules équipées de connecteurs en PEEK LAMBDA à double joint, utilisables pour la prise d’échantillons, l’addition des solutions correctives, etc. Des ports doubles supplémentaires sont également disponibles.
Pompes péristaltiques: Il est possible de connecter des pompes de LAMBDA (PRECIFLOW, MULTIFLOW, HIFLOW, MAXIFLOW, MEGAFLOW) indépendantes, avec contrôle de la vitesse de rotation de 0 à 100 %, au fermenteur de laboratoire /bioréacteur LAMBDA MINIFOR
Contrôle du débit de gaz: Il est possible de rajouter des régulateurs de débit comme le LAMBDA MASSFLOW 5000 (débit de 0 à 5 L/min) ou le LAMBDA MASSFLOW 500 (débit de 0 à 500 ml/min) permettant de gérer l’addition de différents gaz tels que N2, O2, air, CO2 par exemple pour des cultures de cellules; station de gaz librement configurable
Température de fonctionnement: 0 - 40 °C
Humidité relative: 0 - 90 % HR, sans condensation
Poids: 7.5 kg
Contrôle PC: Gestion complète par PC et traitement des données avec les logiciels de fermentation FNet (jusqu’à 6 fermenteurs LAMBDA MINIFOR) ou SIAM (pour la connexion d’une grande variété d’instruments)

2024

Modèle de biofilm multi-espèces dynamique in vitro : Pendant tout le processus d'incubation (biofilms se développant sur les surfaces des implants), le bioréacteur LAMBDA MINIFOR maintient le milieu de culture à 37 °C, pH 7.2 et une atmosphère anaérobie (10% H₂, 10% CO₂ et équilibre N₂).

Bravo, E., Arce, M., Ribeiro-Vidal, H., Herrera, D., & Sanz, M. (2024). The Impact of Candida albicans in the Development, Kinetics, Structure, and Cell Viability of Biofilms on Implant Surfaces—An In Vitro Study with a Validated Multispecies Biofilm Model. International Journal of Molecular Sciences, 25(6), 3277.
https://doi.org/10.3390/ijms25063277

Fermentations en batch immergé (consortia) et fed-batch (L. coryniformis) dans un bioréacteur à cuve agitée LAMBDA MINIFOR et logiciel SIAM : 72 h, volumes de travail finaux = 200 ml, T = 37 ± 0.5 °C, agitation 0.5 Hz, ajout de CO2 à 0.04 L/min, pH 6.5 ± 0.5 en utilisant 1 M NaOH et 1 M H2SO4 pour l'ajustement automatique du pH ; des échantillons ont été prélevés à intervalles réguliers.

Buljubašić, E., Bambace, M. F., Christensen, M. H. L., Ng, K. S., Huertas‐Díaz, L., Sundekilde, U., Marietou, A. & Schwab, C. (2024). Novel Lactobacillaceae strains and consortia to produce propionate‐containing fermentates as biopreservatives. Microbial Biotechnology, 17(2), e14392.

https://doi.org/10.1111/1751-7915.14392

Un modèle de biofilm dynamique multiespèces in vitro a été utilisé et validé sur des biofilms se développant à la surface des implants : le bioréacteur LAMBDA MINIFOR maintient le milieu BHI enrichi en protéines dans des conditions stables : 37 °C, pH 7.2 et une atmosphère anaérobie en pompant directement un gaz anaérobie, mélange (10 % H₂, 10 % CO₂ complété par N₂) à pression constante pendant tout le processus d'incubation

Bravo, E., Arce, M., Ribeiro-Vidal, H., Herrera, D., & Sanz, M. (2024). The Impact of Candida albicans in the Development, Kinetics, Structure, and Cell Viability of Biofilms on Implant Surfaces. An In Vitro Study with a Validated Multispecies Biofilm Model.

https://doi.org/10.20944/preprints202402.1137.v1

Modèle de côlon humain simulé par le LAMBDA MINIFOR avec milieu nutritif basal (37 °C, pH 6.8) et boues fécales.

Pusuntisumpun, N., Tunsagool, P., Nitisinprasert, S., & Nakphaichit, M. (2024). Impacts of combining Limosilactobacillus reuteri KUB‐AC5 and Limosilactobacillus fermentum KUB‐D18 on overweight gut microbiota using a simulated human colon model. International Journal of Food Science & Technology. 

https://doi.org/10.1111/ijfs.16941

400 ml de cellules de tomates isolées ont été mises en culture dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR (20 °C, pH 5.8) avec un certain débit d’air (10 L/h) pour obtenir des concentrations variées d'O2 (21 kPa, 5 kPa et 0 kPa) afin d’étudier les pertes de fruits et légumes durant le stockage sous atmosphère contrôlée en raison d'un faible stress en O2.

Mahomud, M. S., Islam, M., & Roy, J. (2024). Effect of low oxygen stress on the metabolic responses of tomato fruit cells. Heliyon, e24566.

https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2024.e24566

2023

Fermentations continues d'acide itaconique (IA) avec A. terreus spp. : fermenteur de laboratoire autoclavable LAMBDA MINIFOR 3L (volume utile 1.8 litres ; batch de 4 jours, puis taux de dilution 0.007 h-1 ; 33 °C ; pH bas contrôlé ; un semaine 1.5 vvm air, puis 0.2 vvm O2) avec septum pour échantillonnage stérile et agitateur LAMBDA FiSH-TAIL (3.0 s-1) permettant un mélange doux et efficace pour une oxygénation et un échange gazeux optimaux en l'absence d’une suralimentation d'air qui sont des propriétés avantageuses lorsque l'on travaille avec micro-organismes filamenteux pour obtenir une croissance en flocs comme morphologie la plus efficace pour la production d'IA.

Hülber-Beyer, É. A., Nemestóthy, N., & Bélafi-Bakó, K. (2023). Case Study of Continuous Itaconic Acid Fermentation by Aspergillus Terreus in a Bench-Scale Bioreactor. Hungarian Journal of Industry and Chemistry, 51(2), 57-63.
https://doi.org/10.33927/hjic-2023-19

Images de morphologie lors de la fermentation : Fig. 1 sur https://hjic.mk.uni-pannon.hu/index.php/hjic/article/view/1214/1092 (2024 Feb. 08)

Saccharification simultanée (hydrolyse enzymatique par une cellulase et une β-glucosidase) et fermentation (Lacticaseibacillus rhamnosus) de la biomasse de prune lignocellulosique délignifiée prétraitée en acide lactique dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR Advanced Kit (1.7 L ; 37 °C /44 °C ; pH 5.5 / 6.5 ; 72h).

Senila, L., Cadar, O., Kovacs, E., Gal, E., Dan, M., Stupar, Z., Simedru, D., Senila, M. & Roman, C. (2023). L-Poly(lactic acid) Production by Microwave Irradiation of Lactic Acid Obtained from Lignocellulosic Wastes. Int. J. Mol. Sci. 2023, 24, 9817.  

https://doi.org/10.3390/ijms24129817

Fermentation de Bacillus megaterium réalisée en bioréacteur LAMBDA MINIFOR (1.7 L)

Senila, L., Gál, E., Kovacs, E., Cadar, O., Dan, M., Senila, M. & Roman, C. (2023). Poly(3-hydroxybutyrate) Production from Lignocellulosic Wastes Using Bacillus megaterium ATCC 14581. Polymers. 2023, 15, 4488.  

https://doi.org/10.3390/polym15234488

Modèle de biofilm dynamique multi-espèces in vitro utilisant un fermenteur LAMBDA MINIFOR pour l'inolculation et la croissance de bactéries (Streptococcus oralis, Veillonella parvula, Actinomyces naeslundii, Fusobacterium nucleatum, Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis) en atmosphère anaérobie [10 % H2, 10 % CO2, complété par N2]) à 37°C et pH 7.2, suivi d'un transfert vers un appareil Robbins avec des implants dentaires hybrides en titane (HS) avec différentes topographies pour la formation de biofilm.

Bravo, E., Serrano, B., Ribeiro-Vidal, H., Virto, L., Sánchez, I.S., Herrera, D. & Sanz, M. (2023). Biofilm formation on dental implants with a hybrid surface microtopography: An in vitro study in a validated multispecies dynamic biofilm model. John Wiley & Sons, Ltd., 0905-7161. Clinical Oral Implants Research, Volume 34, Issue 5, May 2023 Pages i-iii, 405-541.

https://doi.org/10.1111/clr.14054

Simulation d'un modèle intestinal in vitro avec LAMBDA MINIFOR 0.3L: fermentations discontinues dans des conditions anaérobies (37 °C, pH 6.8 – 6.9, 24 h) de composants fécaux humains (1 % (v/v)) pour évaluer l'effet des extraits de Triphala (1 mg/mL) sur le microbiote et les changements métaboliques.

Kwandee, P., Somnuk, S., Wanikorn, B., Nakphaichit, M. & Tunsagool, P. (2023). Efficacy of Triphala extracts on the changes of obese fecal microbiome and metabolome in the human gut model. Journal of Traditional and Complementary Medicine, Volume 13, Issue 2, 2023, Pages 207-217, ISSN 2225-4110.

https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2023.02.011

Modèle de simulation gastro-intestinale SHIME avec des réacteurs LAMBDA MINIFOR 0.3L: Chaque simulateur d’écosystème microbien intestinal humain se compose de cinq réacteurs, imitant différentes sections du tractus gastro-intestinal humain.

Vidéo disponible sur www.youtube.com/watch?v=hXcpa0bXu6Q montrant Assoc. Prof. Massalin Nakphaichit devant les réacteurs SHIME.

Département de Biotechnologie, Faculté d'Agro-Industrie, Université Kasetsart

Des RODM (un ensemble d'organismes dotés d’un nouveau métabolisme, dégradant efficacement les produits aromatiques hautement concentrés) ont été développés de façon à obtenir un écosystème microbien à haute densité dans un bioréacteur de laboratoire LAMBDA MINIFOR 7L pourvu de sondes programmables.

Ahmad, M., Yousaf, M., Han, J.-C., Huang, Y., Zhou, Y. & Tang, Z. (2023). Development of Biocatalytic Microbial Ecosystem (FPUS@RODMs@In-PAOREs) for Rapid and Sustainable Degradation of Various Refractory Organics. Journal of Hazardous Materials, 2023, 131514, ISSN 0304-3894,

https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2023.131514

Cellules d'hybridome (inoculation 4.0 × 10E5 cellules/mL (viabilité à 90 %) : Fed-batch dans un bioréacteur à cuve agitée LAMBDA MINIFOR.

Llamo, A., Hernández, D., García, C., González, M., Ferro, W., Garay, H., Diago, D., Fajardo, A., Espinosa, L., Padilla, S., Gómez, L., Chinea, G. & and Valdés, R. (2023). Gamma-Immunoglobulin Response Characterization, in COVID-19 Convalescent Patients, Against the Spike Protein S2 Subunit with Eight Linear Peptides for Monoclonal Antibody Generation. BioProcess J, 2023; 22.

 https://doi.org/10.12665/J22OA.Llamo

Optimisation de l'hydrolyse d’huiles végétales catalysée par lipase: Contrôle et suivi par un bioréacteur LAMBDA MINIFOR (pH, température, temps de réaction, charge enzymatique et ratio huile/aqueux du mélange réactionnel).

Faillace, E., Brunini-Bronzini de Caraffa, V., Mariani, M., Berti, L., Maury, J. & Vincenti, S. (2023). Optimizing the First Step of the Biocatalytic Process for Green Leaf Volatiles Production: Lipase-Catalyzed Hydrolysis of Three Vegetable Oils. International Journal of Molecular Sciences. 2023; 24(15):12274.

 https://doi.org/10.3390/ijms241512274

Évaluation de la viabilité et du taux de croissance spécifique maximal de Bacillus licheniformis dans un bioréacteur de laboratoire LAMBDA MINIFOR 7L (volume utile de 2 litres, 37 °C, pH 6.5, 200 tr/min, oxygène contrôlé, fermentation discontinue immergée (SMF), ajout de produits antimousse 204 stérilisé (Sigma-Aldrich))

Dumitru, M. & Ciurescu, G. (2023). Optimization of the fermentation conditions and survival of Bacillus licheniformis as freeze-dried powder for animal probiotic applications. Scientific Papers. Series D. Animal Science. Vol. LXVI, No. 2, 2023; ISSN 2285-5750; ISSN CD-ROM 2285-5769; ISSN Online 2393-2260; ISSN-L 2285-5750.  https://www.animalsciencejournal.usamv.ro/pdf/2023/issue_2/Art10.pdf (2024 Jan. 02)

Bioréacteur LAMBDA MINIFOR 0.4L pour contrôle des conditions (37 °C, pH 7.2, conditions anaérobies constantes (10 % H2, 10 % CO2, N2)) avec module de pesée et pompes de milieu (30 ml/h) dans un modèle de biofilm dynamique in vitro pour simuler l'environnement de la cavité buccale.

Alonso-Español, A., Bravo, E., Ribeiro-Vidal, H., Virto, L., Herrera, D., Alonso, B. & Sanz, M. (2023). The Antimicrobial Activity of Curcumin and Xanthohumol on Bacterial Biofilms Developed over Dental Implant Surfaces. Int. J. Mol. Sci. 2023, 24, 2335.

https://doi.org/10.3390/ijms24032335

Production d'acide itaconique (IA) par fermentation fongique aérobie continue (1.8 L, 37 °C, 0,2 vvm d'oxygène pur, pH naturellement abiassé à <2.5) dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR avec la souche surproductrice d'acide itaconique native Aspergillus terreus NRRL 1966 en utilisant une concentration élevée de glucose (maintenu à ~150 g/L) comme source de carbone.

Rózsenberszki, T., Komáromy, P., Hülber-Beyer, E., Pesti, A., Koók, L., Bakonyi, P., Bélafi-Bakó, K. & Nemestóthy, N. (2023). Bipolar membrane electrodialysis integration into the biotechnological production of itaconic acid: A proof-of-concept study. Chemical Engineering Research and Design, Volume 190, 2023, Pages 187-197, ISSN 0263-8762.

https://doi.org/10.1016/j.cherd.2022.12.023

Du lait a été pasteurisé à 70 °C pendant 30 minutes dans des fermenteurs LAMBDA MINIFOR.
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Fermenteurs LAMBDA MINIFOR : Etude de l'effet de la température sur la croissance de la levure Kazachstania unispora (initialement ~10E6 UFC/ml) dans le lait (800 ml, ~6 % lactose), de 5 °C à 40 °C (5, 10, 15, 20, 25, 27, 30, 32, 35, 37 et 40 °C) à pH 5.6 (réglage automatique avec 2 M de NaOH) et 240 tr/min, jusqu’à ce que la phase stationnaire soit atteinte (capteur de turbidité dans le proche infrarouge en ligne Optek FC20- ASD10-N)
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Fermenteurs LAMBDA MINIFOR pour des expériences de coculture à 25 °C de Lacticaseibacillus casei et Kazachstania unispora dans des milieux MRS modifiés ainsi que dans du lait de jument (initialement : ~10E6 CFU/ml, pH = 6.8)
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Fermenteurs MINIFOR de LAMBDA pour des expériences de coculture à 30 °C de Lactobacillus kefiri et Kazachstania unispora dans des milieux MRS modifiés ainsi que dans du lait de jument (initialment : ~10E6 CFU/ml, pH = 6.8)

Kondybayev, A., Achir, N., Mestres, C., Collombel, I., Strub, C., Grabulos, J., Akhmetsadykov, N., Aubakirova, A., Kamidinkyzy, U., Ghanmi, W. & Konuspayeva, G. (2023). Growth Kinetics of Kazachstania unispora and Its Interaction with Lactic Acid Bacteria during Qymyz Production. Fermentation 2023, 9, 101.

https://doi.org/10.3390/fermentation9020101

Production efficace d'éthanol à partir de perméat de lactosérum (WP) et de perméat concentré (CWP) avec E. coli modifié dans un bioréacteur à pH contrôlé LAMBDA MINIFOR

Pasotti, L., De Marchi, D., Casanova, M., Frusteri Chiacchiera, A., Cusella De Angelis, M. G., Calvio, C., & Magni, P. (2023). Design of a stable ethanologenic bacterial strain without heterologous plasmids and antibiotic resistance genes for efficient ethanol production from concentrated dairy waste. Biotechnology for Biofuels and Bioproducts, 16(1), 1-13.

https://doi.org/10.1186/s12896-017-0369-y

2022:

Production de biosurfactant (BS, 32 g/L) par Lactobacillus acidophilus dans un bioréacteur de laboratoire LAMBDA MINIFOR 7L (volume de travail 3.5 litres, 30 °C, pH = 6.5, 120 h de culture batch), purification du surnageant et études BS.

Abdullah, A.R. & Ismail, H.H.(2022). Cytotoxic effect of biosurfactant produced by Lactobacillus acidophilus and study its synergistic effect with certain antibiotics against S. aureus and E. coli. Eurasian Medical Research Periodical, 12, 33–40.

www.geniusjournals.org/index.php/emrp/article/view/2162 (2022 Sept. 22)

Bioréacteur et fermenteur de laboratoire LAMBDA MINIFOR à usage scolaire.

Technologische Fachoberschule Bruneck, Fachrichtung Chemie, Werkstoffe und Biotechnologie (2021). Bioreaktor.

www.facebook.com/watch/?v=239416121364132 (2022 September 13)

Etudes de la croissance de bactéries lactiques : Effet de la température sur Lacticaseibacillus casei et Lactobacillus kefiri.

Kondybayev, A.; Konuspayeva, G.; Strub, C.; Loiseau, G.; Mestres, C.; Grabulos, J.; Manzano, M.; Akhmetsadykova, S. & Achir, N. (2022). Growth and Metabolism of Lacticaseibacillus casei and Lactobacillus kefiri Isolated from Qymyz, a Traditional Fermented Central Asian Beverage. Fermentation 2022, 8, 367.

https://doi.org/10.3390/fermentation8080367

Deux fermenteurs continus (HRT = 5 jours) à cuve agitée LAMBDA MINIFOR ont été utilisés dans des conditions anaérobies (N2 dans l'espace de tête et barbotage) durant 65 jours, chacun avec un volume de milieu de 1 litre (modification des concentrations de lactate / acétate). Ils ont été inoculés avec des boues produisant du caproate (Caproiciproducens, famille des Ruminococcaceae). Ils bénéficient d'un contrôle de la température (30 °C, lampe IR intégrée, sonde Mettler InPro 3253) et du pH (pH 5.5, NaOH 2M, HCl 0.5M) ) avec quatre pompes péristaltiques (alimentation, effluent, base & acide). Des échantillons sont prélevés quotidiennement pour analyse des carboxylates et des alcools.

Brodowski, F., Lezyk, M., Gutowska, N., Kabasakal, T. & Oleskowicz-Popiel, P. (2022). Influence of lactate to acetate ratio on biological production of medium chain carboxylates via open culture fermentation. Science of The Total Environment, Volume 851, Part 1, 2022, 158171, ISSN 0048-9697.

https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2022.158171

Culture continue : 1 mois en photobioréacteur LAMBDA MINIFOR PBR en chémostat (1L ; 30 °C ; 1 L/min d'air enrichi en CO2 (0.5 %) ; 5 Hz, pH 8 ; lumière blanche) avec Synechocystis sp. CCP 6803

Behle, A., Dietsch, M., Goldschmidt, L., Murugathas, W., Berwanger, L.C., Burmester, J., Yao, L., Brandt, D., Busche, T., Kalinowski, J., Hudson, E.P., Ebenhöh, O., Axmann, I.M. & Machné, R. (2022). Manipulation of topoisomerase expression inhibits cell division but not growth and reveals a distinctive promoter structure in Synechocystis. Nucleic Acids Research, Volume 50, Issue 22, 9 December 2022, Pages 12790–12808.

https://doi.org/10.1093/nar/gkac1132

Résolution biocatalytique du racémate de la lupanine dans les eaux usées industrielles par Pseudomonas putida LPK411 à l'aide d'un bioréacteur LAMBDA MINIFOR 0.4L à l'échelle du laboratoire en fonctionnement discontinu.

Parmaki, S., Esteves, T., Gonçalves, J.M.J. Catenacci, A., Malpei, F., Ferreira, F.C., Afonso C.A.M & Koutinas, M. (2022). Selective microbial resolution of lupanine racemate: Bioprocess development and the impact of carbon catabolite repression on industrial wastewater valorisation. Biomass Conv. Bioref. (2022).

https://doi.org/10.1007/s13399-022-03383-3

Pour la libération de peptides bioactifs, l'isolat de protéine Kiwicha dilué (KPI) de la farine de graines d'Amaranthus caudatus L. a été soumis à une hydrolyse enzymatique avec la bioprotéase LA-660 par une agitation continue, un contrôle du pH et de la température (pH 8 ; 50 °C ) dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR.

Martinez-Lopez, A., Rivero-Pino, F., Villanueva, A., Toscano, R., Grao-Cruces, E., Marquez-Paradas, E., Martin, M.E., Montserrat-de la Paz, S. & Millan-Linaresa, M.C. (2022). Kiwicha (Amaranthus caudatus L.) protein hydrolysates reduce intestinal inflammation by modulating the NLRP3 inflammasome pathway. Food & Function 2022 Oct 21.

https://doi.org/10.1039/D2FO02177C

Les fermenteurs LAMBDA MINIFOR équipés de modules de pesage pour contrôler les pompes de récolte pour le processus biotechnologique anaérobie continu ont été utilisés pour vérifier comment l'acétate externe affecte le spectre du produit, la production de gaz, la stabilité et l'efficacité de la production de carboxylates..

Brodowski, F., Lezyk, M., Gutowska & Oleskowicz-Popiel, P. (2022). Effect of external acetate on lactate-based carboxylate platform: Shifted lactate overloading limit and hydrogen co-production. Science of The Total Environment, Volume 802, 2022, 149885, ISSN 0048-9697.

https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.149885

Souche mutante d'Escherichia coli (E. coli; E44Δ) pour la production d'une grande quantité de vésicules de membrane externe (OMV) dans un fermenteur LAMBDA MINIFOR 7L

Allahghadry, T., Bojesen, A.M., Whitehead, B.J. and Antenucci, F. (2022). Clarification of large-volume bacterial cultures using a centrifuge-free protocol. J Appl Microbiol. Accepted Author Manuscript.

https://doi.org/10.1111/jam.15608

2021:

Expériences en phase liquide (hydrolysat d'hémicelluloses) pour la production de xylitol : la fermentation de 250 ml d'hydrolysat détoxifié a été réalisée dans un fermenteur LAMBDA MINIFOR 1L pour paillasse de laboratoire avec contrôle du pH (pH 5.0) dans des conditions aérobies à 30 °C pendant 60 h.

Shalsh, D., Nagimm, D., Alrheem, M.A. & Alrheem, S.A. (2021). Batch fermentation and Simultaneous Saccharification and Fermentation (SSF) processes by Meyerozyma Guilliermondii Strain F22 and Saccharomyces cerecvisae for xylitol and bioethanol co-production. Al-Qadisiyah Journal of Pure Science, 26(4), 80–94.

https://doi.org/10.29350/qjps.2021.26.4.1347

La croissance, la consommation de glucose et la production d'éthanol de la souche Saccharomyces cerevisiae LM dans un bouillon synthétique ont été modélisées pour le facteur le plus important. Des fermenteurs LAMBDA MINIFOR 1L équipés d'un condenseur d'eau froide sur des tuyaux de sortie d'air ont été utilisés.

Kouamé, C., Loiseau, G., Grabulos, J., Boulanger, R. & Mestres, C. (2021). Development of a model for the alcoholic fermentation of cocoa beans by a Saccharomyces cerevisiae strain. International Journal of Food Microbiology, Volume 337, 2021, 108917, ISSN 0168-1605.

https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2020.108917

Culture continue de cyanobactéries Synechocystis sp. PCC 6803 dans un photo-bioréacteur LAMBDA MINIFOR 1L PBR.

Behle, A., Dietsch, M., Goldschmidt, L., Murugathas, W., Brandt, D., Busche, T., Kalinowski, J., Ebenhöh, O., Axmann, I. M. & Machné, R. (2021) Uncoupling of the Diurnal Growth Program by Artificial Genome Relaxation in Synechocystis sp. PCC 6803. bioRxiv 2021.07.26.453758.

https://doi.org/10.1101/2021.07.26.453758

L'hydrolyse de l'isolât de protéines de kiwicha (KPI) est réalisée sous agitation continue, à l'aide d'un fermenteur-bioréacteur LAMBDA MINIFOR, dans des conditions de pH et de température contrôlées : la bioprotéase LA-660 est ajoutée à un ratio enzyme/substrat = 0.3 UA/g de protéine ( pH 8) pendant 5, 10, 15, 30 et 60 min.

Paz, S. M. D. L., Martinez-Lopez, A., Villanueva-Lazo, A., Pedroche, J., Millan, F., & Millan-Linares, M. C. (2021). Identification and characterization of novel antioxidant protein hydrolysates from kiwicha (Amaranthus caudatus L.). Antioxidants, 10(5), 645.

https://doi.org/10.3390/antiox10050645

La transformation biologique de la biomasse de sorgho blanc a été réalisée dans des conditions opératoires similaires au procédé MixAlco dans le bioréacteur LAMBDA MINIFOR.

Shalsh, F.J., Alrazzaq, N.A., Nagimm D.K., Alrheem, M.A., Alrheem S.A. & Abd-alalah, K. (2021). Bioconversion of white sorghum biomass using MixAlco fermentation process. DYSONA – Applied Science. 2021(2), 21-27. ISSN 2708-6283.

https://doi.org/10.30493/DAS.2021.248966

2020:

Différentes souches de levure ont été cultivées dans le fermenteur LAMBDA MINIFOR0.4L pour étudier le cycle et la voie métaboliques : A) Lot de 200 ml : milieu YMC-YE / YMC-MD, pH 3.5, aération 0.15 L/min, 30 °C ; B) limitation 6 h ; C) culture continue : taux de dilution de 0.082 1/h.

J. Feltham, S. Xi, S. Murray, M. Wouters, J. Urdiain-Arraiza, C. George, A. Townley, E. Roberts, R. Fisher, S. Liberatori, S. Mohammed, B. Kessler & J. Mellor. (2020). Transcriptional changes are regulated by metabolic pathway dynamics but decoupled from protein levels. bioRxiv 833921.

https://doi.org/10.1101/833921

Le bioréacteur LAMBDA MINIFOR est utilisé comme bioréacteur à membrane de type Rumen pour produire des acides gras (AGG) issus des résidus de culture (biomasse lignocellulosique) en imitant le système digestif des ruminants : équipé de 2 pompes péristaltiques (pompe à salive et à perméat), d'un agitateur vertical, d'une sonde redox-température-pH, d'un régulateur de température et d'un module immergé à membrane à fibres creuses.

Nguyen, A.Q., Nguyen, L.N., Abu Hasan Johir, M., Ngo, H-H., Chaves, A.V. & Nghiem, L.D. (2020) Derivation of volatile fatty acid from crop residues digestion using a rumen membrane bioreactor: a feasibility study. Bioresource Technology 2020.

https://doi.org/10.1016/j.biortech.2020.123571

Des expériences d'hydrolyse enzymatique ont été réalisées dans le bioréacteur batch agité LAMBDA MINIFOR à l'échelle du laboratoire. Les déchets de sarments prétraités ont été délignifiés au chlorite de sodium pour éliminer la lignine puis hydrolysés enzymatiquement à l'aide de nouveaux types d'enzymes (cellulase de Trichoderma reesei et b-glucosidase).

Eniko Kovacs, Daniela Alexandra Scurtu, Lacrimioara Senila, Oana Cadar, Diana Elena Dumitras & Cecilia Roman (2020). Green Protocols for the Isolation of Carbohydrates from Vineyard Vine-Shoot Waste. Analytical Letters.

https://doi.org/10.1080/00032719.2020.1721001

Bioréacteur LAMBDA MINIFOR utilisé pour la production biotechnologique d'acide itaconique à partir de glucose par la souche fongique Aspergillus terreus : 1.8 L de milieu avec 120 g/L de glucose comme substrat, mode batch, aérobie : aération 2 L/min (STP) = 6.5 mg/L DO initial, 37 °C, agitation 2 Hz, pH 3)

Nemestóthy, N., Komáromy, P., Bakonyi, P. et al. (2020). Carbohydrate to Itaconic Acid Conversion by Aspergillus terreus and the Evaluation of Process Monitoring Based on the Measurement of CO2 Waste and Biomass. Valorization 2020.

https://doi.org/10.1007/s12649-019-00729-3

2019:

Bioréacteur turbidostat LAMBDA MINIFOR 0.4L avec pompes LAMBDA PRECIFLOW pour le milieu dans des expérimentations avec cellules recombinantes.

Pasotti, L., Bellato, M., Politi, N., Casanova, M., ucca, S., Gabriella, M., De Angelis, C. & Magni, P. (2019). A synthetic close-loop controller circuit for the regulation of an extracellular molecule by engineered bacteria. IEEE Trans Biomed Circuits Syst. 2019 Feb; 13(1):248-258.

https://doi.org/10.1109/TBCAS.2018.2883350

Optimisation du pH pour la production aérobie d'acide itaconique catalysée par Aspergillus terreus dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR : Batch, volume de milieu 1,8 L, milieu contenant 120 g/L de glucose, 37 °C, pH 3 - pH 2.5 - pH 4 - pH 3 - pH 2.5, agitation 2 Hz, aération 1.5 L (TPS)/min.

Komáromy, K., Bakonyi, P., Kucska, A., Tóth, G., Gubicza, L., Bélafi-Bakó, K. & Nemestóthy, N. (2019). Optimized pH and Its Control Strategy Lead to Enhanced Itaconic Acid Fermentation by Aspergillus terreus on Glucose Substrate. Fermentation 2019, 5(2), 31

https://doi.org/10.3390/fermentation5020031

Production de rhamnolipide (RL) par Pseudomonas aeruginosa dans un fermenteur LAMBDA MINIFOR 7L (30 °C, pH 6.5, batch, 120 h) pour la purification du métabolites secondaires.

Faqri, A. F., Hayder, N.H. & Hashim, A.J. (2019). Lab-scale production of Rhamnolipid by Pseudomonas Aeruginosa A3 and study its synergistic effect with certain antibiotics against some pathogenic bacteria. Iraqi Journal of Agricultural Sciences –2019:50(5):1290-1301.

https://doi.org/10.13140/RG.2.2.10802.35520

2018:

Une méthode de production à grande échelle a été développée dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR pour une production à haut rendement de pro-siARN.

Kaur, G., Cheung, H. C., Xu, W., Wong, J. V., Chan, F. F., Li, Y., McReynolds, L. & Huang, L. (2018). Milligram scale production of potent recombinant small interfering RNAs in Escherichia coli. Biotechnology and Bioengineering, 115(9), 2280-2291.

https://doi.org/10.1002/bit.26740

Le fermenteur de laboratoire de paillasse LAMBDA MINIFOR a été utilisé pour la production de bioéthanol dans des conditions optimisées : 3.5 litres de milieu avec S. cerevisiae activé (inoculation 2 % (v/v), DO= 0.5, 1.5×10e8 CFU/mL) en fermentation aérobie pendant 24 h à 30 °C, puis en conditions anaérobies pendant 70 h à 30 °C.

Hayder, N. H., Flayeh, H. M., & Ahmed, A. W. (2018). Optimization of bioethanol production from biodegradable municipal solid waste using response surface methodology (RSM). Journal of Engineering and Sustainable Development, 22(1), 47-64.

https://www.iasj.net/iasj/download/28dcbea4ab5f5ba8 (2024 Feb. 05)

2017:

Comparaison de la production expérimentale et théorique de biogaz. Le bioréacteur LAMBDA MINIFOR rempli de 2 litres de milieu a été incubé en anaérobie à 35 ° C pendant 1 mois.

El Asri, O., & Afilal, M. E. (2018). Comparison of the experimental and theoretical production of biogas by monosaccharides, disaccharides, and amino acids. International Journal of Environmental Science and Technology, 15(9), 1957-1966.

https://doi.org/10.1007/s13762-017-1570-1

Étude du métabolisme de cellules isolées de mâche (Valerianella locusta (L). Laterr.) en cas de limitation de sucre dans des conditions de stress O2 en utilisant du glucose marqué au 13C [U-13C6] dans un bioréacteur de laboratoire de paillasse LAMBDA MINIFOR (absence de lumière, 250 ml, pH 5.8, 18 °C, aération 10 L/h)

Victor, B. M. M., Ampofo-Asiama, J., Hertog, M., Geeraerd, A. H., & Nicolai, B. M. (2017). Metabolic profiling reveals a coordinated response of isolated lamb's (Valerianella locusta, L.) lettuce cells to sugar starvation and low oxygen stress. Postharvest Biology and Technology, 126, 23-33.

https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2016.12.004

Fermenteurs LAMBDA MINIFOR utilisés comme digesteurs agités continu (CSTR) dans des conditions anaérobies pour la digestion anaérobie des déchets solides organiques

Nakasima-López, M., Taboada-González, P., Aguilar-Virgen, Q., & Velázquez-Limón, N. (2017). Adaptación de inóculos durante el arranque de la digestión anaerobia con residuos sólidos orgánicos. Información tecnológica, 28(1), 199-208.

https://dx.doi.org/10.4067/S0718-07642017000100020

L’effet de différentes températures sur la privation de sucre dans des cellules isolées de légumes à feuilles frais a été étudié dans le bioréacteur LAMBDA MINIFOR.

Mbong, V. B. M., Ampofo-Asiama, J., Hertog, M. L., Geeraerd, A. H., & Nicolai, B. M. (2017). The effect of temperature on the metabolic response of lamb’s lettuce (Valerianella locusta,(L), Laterr.) cells to sugar starvation. Postharvest Biology and Technology, 125, 1-12.

https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2016.10.013

Bioréacteur LAMBDA MINIFOR pour la production de mAb CB.Hep-1 en utilisant la culture de cellules d'hybridomes de souris dans un milieu sans protéines.

Valdés, R., Aragón, H., González, M., Hernández, D., Geada, D., Goitizolo, D., Ferro, W., Pérez, A., García, J., Masforrol, Y, Aguilar, P., Márquez, G., LaO, M., González, T., Calvo, Y., Hernández, A., Menéndez, G. & Tamayo, A. (2017). Mouse Hybridoma Cell Culture in a Protein-Free Medium Using a Bio-Mimicking Fish-Tail Disc Stirred Bioreactor. BioProcessing Journal, 16(1).

https://doi.org/10.12665/J161.Valdes

2016:

Production robuste d'éthanol cellulosique à partir de bagasse de canne à sucre avec Saccharomyces cerevisiae ATCC 20602 dans le bioréacteur de laboratoire LAMBDA MINIFOR dans des conditions aérobies et anaérobies avec mesure contrôlée du potentiel redox

Jabasingh, S. A., Lalith, D., Prabhu, M. A., Yimam, A., & Zewdu, T. (2016). Catalytic conversion of sugarcane bagasse to cellulosic ethanol: TiO2 coupled nanocellulose as an effective hydrolysis enhancer. Carbohydrate polymers, 136, 700-709.

https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2015.09.098

2015:

Système de bioréacteur LAMBDA MINIFOR utilisé comme bouche artificielle pour la croissance de biofilms

LA BOCA ARTIFICIAL DE DENTAID UNA REVOLUCIÓN EN INVESTIGACIÓN BUCODENTAL
DENTAID EXPERTISE, PUBLICACIÓN PARA PROFESIONALES DE LA ODONTOLOGÍA, NÚM. 18.

https://aprenderly.com/doc/3463742/la-boca-artificial-de-dentaid-una-revolución-en-investiga…?page=5 (2024 Feb. 05)

La protéine S. pyogenes Cas9 a été exprimée dans E. coli à l'aide d'un bioréacteur MINIFOR 3L de LAMBDA contrôlé par ordinateur en mode batch suivi d'une alimentation exponentielle.

Ménoret, S., De Cian, A., Tesson, L., Remy, S., Usal, C., Boulé, J. B., Boix, C., Fontanière, S., Crénéguy, A., Nguyen, T.H., Brusselle, L., Thinard, R., Gauguier, D., Concordet, J.-P., Cherifi, Y., Fraichard, A., Giovannangeli, C. & Anegon, I. (2015). Homology-directed repair in rodent zygotes using Cas9 and TALEN engineered proteins. Scientific reports, 5(1), 14410.

https://doi.org/10.1038/srep14410

Fermentation d'un micro-organisme modifié dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR à l'échelle du laboratoire pour une conversion efficace du lactose en éthanol

Pasotti, L., Zucca, S., Casanova, M., Massaiu, I., Mazzini, G., Micoli, G., Calvio, C., Cusella de Angelis, M.G. & Magni, P. (2015, August). Methods for genetic optimization of biocatalysts for biofuel production from dairy waste through synthetic biology. In 2015 37th Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society (EMBC) (pp. 953-956). IEEE.

https://doi.org/10.1109/EMBC.2015.7318521

Un modèle de biofilm à cellules d'écoulement de six espèces a été développé en cultivant des bactéries dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR pour évaluer le développement du biofilm dans des conditions d'écoulement et de cisaillement.

Salli, K. M., & Ouwehand, A. C. (2015). The use of in vitro model systems to study dental biofilms associated with caries: a short review. Journal of oral microbiology, 7(1), 26149.

https://doi.org/10.3402/jom.v7.26149

Quantification des protéines ribosomiales (RP) provenant de cellules de levure cultivées dans le bioréacteur LAMBDA MINIFOR et de cellules souches embryonnaires de souris (ESC) pour étudier la stœchiométrie des RP de base.

Slavov, N., Semrau, S., Airoldi, E., Budnik, B., & van Oudenaarden, A. (2015). Differential stoichiometry among core ribosomal proteins. Cell reports, 13(5), 865-873.

https://doi.org/10.1016/j.celrep.2015.09.056

Harvard University, USA; Broad Institute of MIT and Harvard, USA and Hubrecht Institute, Netherlands.

2014:

Culture de microalgues (Chlorella vulgaris Beyerinck) en laboratoire dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR.

Heitur, H. (2014). Mikrovetika Chlorella vulgaris Beyerincki kasvatamine CO2 sidumise eesmärgil (Master's thesis).

https://hdl.handle.net/10492/1842 (2024 Feb. 05)

Eesti Maaülikool (Estonian University of Life Sciences), Estonia.

Culture de cultures de levures (DBY12007) à l'état d'équilibre dans un fermenteur LAMBDA MINIFOR pour étudier la glycolyse aérobie et le flux énergétique

Slavov, N., Budnik, B. A., Schwab, D., Airoldi, E. M., & van Oudenaarden, A. (2014). Constant growth rate can be supported by decreasing energy flux and increasing aerobic glycolysis. Cell reports, 7(3), 705-714.

https://doi.org/10.1016/j.celrep.2014.03.057

Massachusetts Institute of Technology, USA; Harvard University, USA; Hubrecht Institute, Royal Netherlands Academy of Arts and Sciences and University Medical Center Utrecht, Netherlands and Princeton University, USA.

Fermentation discontinue sélective et non sélective d'extrait de datte à l'aide de Saccharomyces cerevisiae (souches sélectives de glucose ATCC 36858 et ATCC 36859) étudiée dans le fermenteur LAMBDA MINIFOR

Putra, M. D., Abasaeed, A. E., Zeinelabdeen, M. A., Gaily, M. H., & Sulieman, A. K. (2014, April). Selective fermentation of pitted dates by S. cerevisiae for the production of concentrated fructose syrups and ethanol. In Journal of Physics: Conference Series (Vol. 495, No. 1, p. 012034). IOP Publishing.

https://doi.org/10.1088/1742-6596/495/1/012034

King Saud University, Chemical Engineering Department, Saudi Arabia

La réponse au stress métabolique de la culture de cellules de tomate (Lycopersicum esculentum) à une faible teneur en oxygène étudiée à l'aide du bioréacteur LAMBDA MINIFOR

Ampofo‐Asiama, J., Baiye, V. M. M., Hertog, M. L. A. T. M., Waelkens, E., Geeraerd, A. H., & Nicolai, B. M. (2014). The metabolic response of cultured tomato cells to low oxygen stress. Plant Biology, 16(3), 594-606.

https://doi.org/10.1111/plb.12094

KU Leuven, Belgium; Flanders Centre of Postharvest Technology (VCBT), Leuven, Belgium.

Bioréacteur LAMBDA MINIFOR pour cultiver les bactéries buccales (Streptococcus oralis, Actinomyces naeslundii, Veillonella parvula, Fusobacterium nucleatum, Aggregatibacter actinomycetemcomitans et Porphyromonas gingivalis) dans des conditions planctoniques

Blanc, V., Isabal, S., Sanchez, M. C., Llama‐Palacios, A., Herrera, D., Sanz, M., & León, R. (2014). Characterization and application of a flow system for in vitro multispecies oral biofilm formation. Journal of Periodontal Research, 49(3), 323-332.

https://doi.org/10.1111/jre.12110

DENTAID S. L., Cerdanyola del Vallès, Spain; ETEP Research Group, University Complutense of Madrid, Spain.

Bioréacteur LAMBDA MINIFOR utilisé pour l'expression de protéines recombinantes (chimiokines) chez E. coli

Kramp, B. (2014). Establishing the interaction between the CC chemokine ligand 5 and the receptors CCR1 and CCR (Doctoral dissertation, Aachen, Techn. Hochsch., Diss., 2013).

https://core.ac.uk/download/pdf/36589112.pdf (2024 Feb. 05)

RWTH Aachen, Germany.

2013:

Développement d'un modèle de biofilm (S. oralis, A. naeslundii, V. parvula, F. nucleatum, A. actinomycetemcomitans et P. gingivalis) en flux continu dans un bioréacteur LAMBDA MINIFOR 0.4L.

Soto, I. S. (2013). Desarrollo del modelo de boca artificial en flujo continuo en el biorreactor Lambda Minifor. Universidad Complutense de Madrid Master en Ciencias Odontológicas.

https://docta.ucm.es/rest/api/core/bitstreams/39d8318b-a49b-4cb3-a164-e4faab18f52b/content (2024 Feb. 05)

Expression recombinante de Met-CCL5, CXCL12 (S4V) résistant à la protéase et F1-CX3CL1 dans E. coli à l'aide du fermenteur/bioréacteur LAMBDA MINIFOR pour étudier leur rôle dans les maladies cardiovasculaires (MCV)

Projahn, D. (2013). Generation, function and therapeutic application of chemotactic cytokines in cardiovascular diseases (Doctoral dissertation, Aachen, Techn. Hochsch., Diss., 2013).

https://publications.rwth-aachen.de/record/229207/files/4840.pdf (2024 Feb. 05)

RWTH Aachen, Germany.

Expression de la protéine Caf1 à l'aide de la souche Escherichia coli dans un fermenteur LAMBDA MINIFOR pour étudier l'adhésion, la forme et le nombre d'adhésions focales des cellules de mammifères

Machado Roque, A. I. (2013). Protein scaffolds for cell culture (Doctoral dissertation, Newcastle University).

URI: https://hdl.handle.net/10443/1843 (2024 Feb. 05)

Newcastle University, UK.

Croissance contrôlée de Staphylococcus aureus sous diverses concentrations de BAC (chlorure de benzalkonium) dans un fermenteur LAMBDA MINIFOR

Cervinkova, D., Babak, V., Marosevic, D., Kubikova, I., & Jaglic, Z. (2013). The role of the qacA gene in mediating resistance to quaternary ammonium compounds. Microbial Drug Resistance, 19(3), 160-167.

https://doi.org/10.1089/mdr.2012.0154

Veterinary Research Institute, Brno, Czech Republic.

2012:

Production de bioéthanol à partir de levure (S. cerevisiae) dans un fermenteur LAMBDA MINIFOR

Mezule, L., Tihomirova, K., Nescerecka, A., & Juhna, T. (2012). Biobutanol production from agricultural waste: A simple approach for pre-treatment and hydrolysis. Latvian Journal of Chemistry, 51(4), 407.

https://doi.org/10.2478/v10161-012-0028-5

2011:

Bioethanol production using Yeast (S. cerevisiae) in LAMBDA MINIFOR fermenter

Burešová, I., & Hřivna, L. (2011). Effect of wheat gluten proteins on bioethanol yield from grain. Applied Energy, 88(4), 1205-1210.

https://doi.org/10.1016/j.apenergy.2010.10.036

2010:

Fermentation anaérobie du composant glucose dans l'extrait de dattes par la levure Saccharomyces cerevisiae

Gaily, M. H., Elhassan, B. M., Abasaeed, A. E., & Al-Zahrani, S. M. (2010). A direct process for the production of high fructose syrups from dates extracts. International Journal of Food Engineering, 6(3).

https://doi.org/10.2202/1556-3758.1879

King Saud University, Saudi Arabia; University of Khartoum, Sudan

Etude du potentiel des tiges de tabac d'arbre (Nicotiana glauca r. Grah.) comme matière première pour la production de bioéthanol avec le fermenteur LAMBDA MINIFOR

Sánchez, F., Curt, M. D., Barreiro, M., Fernández, J., Agüera, J. M., Uceda, M., & Zaragoza, G. (2010). TREE TOBACCO (NICOTIANA GLAUCA R. GRAH.) STEMS AS A BIOETHANOL FEEDSTOCK. 18th European Biomass Conference and Exhibition, 3-7 May 2010, Lyon, France.

https://www.researchgate.net/profile/Francisco-Sanchez-13/publication/290439533_Tree_Tobacco_Nicotiana_glauca_RGrah_Stems_as_a_Bioethanol_Feedstock/links/56fa3d4608ae81582bf44ca4/Tree-Tobacco-Nicotiana-glauca-RGrah-Stems-as-a-Bioethanol-Feedstock.pdf (2024 Feb. 05)

Dpt. Producción Vegetal: Botánica y Protección Vegetal. Universidad Politécnica de Madrid (UPM), Madrid, Spain

2009:

Détermination du potentiel pour la production d’alcool des glucides non cellulosiques des cladodes de figue de Barbarie par fermentation avec la levure Saccharomyces cerevisiae (souches commerciales)

Sánchez, F., Curt, M. D., Fernández, J., Agüera, J. M., Uceda, M., & Zaragoza, G. (2009). Bioethanol production from prickly pear (Opuntia ficus-indica (L.) Mill.) cladodes. In Proc. 17th European Biomass Conference. Pub. ETA-Florence Renewable Energies & WIP-Renewable Energies. ISBN (pp. 978-88).

https://www.researchgate.net/profile/Francisco-Sanchez-13/publication/290439312_Bioethanol_Production_from_Prickly_Pear_Opuntia_ficus-indica_L_Mill_Cladodes/links/56fa3edd08ae38d710a31fc1/Bioethanol-Production-from-Prickly-Pear-Opuntia-ficus-indica-L-Mill-Cladodes.pdf (2024 Feb. 05)

Dpt. Producción Vegetal: Botánica y Protección Vegetal. Universidad Politécnica de Madrid (UPM), Madrid, Spain

2007:

Expression anaérobie avec le MINIFOR de LAMBDA

Park, M. O., Mizutani, T., & Jones, P. R. (2007). Glyceraldehyde-3-phosphate ferredoxin oxidoreductase from Methanococcus maripaludis. Journal of bacteriology, 189(20), 7281-7289.

https://doi.org/10.1128/jb.00828-07

Research and Development Division, Fujirebio Incorporated, Japan.

2006:

Bioréacteurs de paillasse à cuve agitée LAMBDA MINIFOR (1-5 L) pour la culture cellulaire à haute densité Croissance d'hybridomes et production d'AcM à haut rendement

Howard, G.C., & Kaser, M.R. (Eds.). (2006). Making and Using Antibodies: A Practical Handbook (1st ed.). CRC Press.

https://doi.org/10.1201/9781420005196

2005:

Enregistrement en continu du pH et de la température avec le bioréacteur LAMBDA MINIFOR et le logiciel PC SIAM

Chaignon, P., Cortial, S., Guerineau, V., Adeline, M. T., Giannotti, C., Fan, G., & Ouazzani, J. (2005). Photochemical Reactivity of Trifluoromethyl Aromatic Amines: The Example of 3, 5‐diamino‐trifluoromethyl‐benzene (3, 5‐DABTF). Photochemistry and photobiology, 81(6), 1539-1543.

https://doi.org/10.1562/2005-08-03-RA-637

Institut de Chimie des Substances Naturelles, C.N.R.S, France.

2003:

Un aperçu des innovations mises en œuvre dans les bioréacteurs et fermenteurs LAMBDA MINIFOR

Lehky, P. (2003) Bioreactors - New Solutions for Old Problems. International Congress on Bioreactor Technology, Tampere, Finland.

www.bioreactors.eu/files/bioreactor/minifor-bioreactors-article.pdf (2024 Feb. 05)

Do you sell/ship to the USA?

Yes, we do supply our instruments directly with door-to-door delivery option by the parcel services to the USA.

What is the availability of the product?

We have the instruments in stock. We would just have to configure the instruments according to your requirements and perform quality control before shipping.

Is there a warranty?

We offer a 2 year warranty for MINIFOR fermentor / bioreactor and 5 year warranty for the PRECIFLOW & MULTIFLOW peristaltic pumps.

Does this fermentor work on both mammalian cells and yeast cells?

Yes, MINIFOR fermentor and bioreactor can be used for mammalian and yeast cell cultures (More information at www.fermentor.net/applications).

Is there flexibility in the top plate to add or remove probes?

Yes, MINIFOR has free ports in the headspace for the additional probes (sensors). Multiple ports and other effective solutions in the fermentation glass vess make the MINIFOR configuration equivalent to 16 to 22 classical ports (it is possible to increase the number of ports – custom made solution)

Is the equipment suitable for use in pure / mixed culture?

Yes, MINIFOR is suitable for pure as well as mixed culture. The stirrer is strong and can easily be adapted according to the types of cultures and working volumes.

Why is MINIFOR perfectly suitable for parallel processes?

Each unit stays independent as it is equipped with a control panel and display and at a single glance shows the parameter values. All parameters are regulated locally inside each fermenter-bioreactor unit.

This allows fast and precise parameter regulation and never having to worry about leaving a vessel unattended. Further advantage is that in case there are problems with one unit, the other units will still keep running.

How important is the slowdown in parameter regulation while running 12 bioreactors in parallel?

An important aspect to consider – which, however, does not play a role in the LAMBDA MINIFOR parallel system because each MINIFOR fermenter comes with its proper regulation unit that measures and controls all parameters locally. As a consequence the quality of the measurement and regulation is not affected by long transmission times and dead times in regulation.

How much space is required for the MINIFOR unit?

Footprint: approximately a sheet of paper
Dimensions: 22 cm x 38 cm x 40 cm (W x H x D)